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    血細胞分離技術

    發(fā)布時間: 2010-07-06  點擊次數(shù): 2680次

    采血

    (一)材料與試劑

    1.抗凝劑
    (1)肝素:肝素是含硫酸基的粘多糖,常用其鈉鹽或鉀鹽,它能阻止凝血酶原轉化為凝血酶,進而抑制纖維蛋白原形成纖維蛋白,從而阻止血液凝固。常用的肝素溶液濃度為1 000U/ml,市售肝素多為100U~126U/mg。
    (2)乙二胺四乙酸(EDTA):是一種螯合劑。用生理鹽水配制成4%的溶液備用。
    (3)阿氏液(Alsever液),配方如下:
    枸櫞酸鈉(Na3C6H5O7·5H2O) 0.80g
    枸櫞酸 0.0325g
    葡萄糖 2.05g
    氯化鈉 0.42g
    H2O 加至 100.00ml
    混勻溶解后,114.3℃高壓蒸汽滅菌10min備用。
    阿氏液中既含有枸櫞酸鈉抗凝劑,又含有細胞生存的營養(yǎng),所以它既可做抗凝劑,又可做血細胞的保存液。
    2.針頭 根據(jù)不同動物和采血部位,采用不同型號的針頭,用前必須滅菌或消毒。
    3.采血容器 注射器或三角瓶等。
    4.采血動物。

    (二)操作方法
    1.采血法 各種動物采血方法不一。馬、牛、羊等大動物一般從頸靜脈采血,豬從頸靜脈、前腔靜脈或耳靜脈采血,家禽由翼下靜脈或心臟采血,兔由心臟或耳靜脈采血,犬由頸靜脈或四肢靜脈采血,豚鼠由心臟采血,小白鼠則可斷尾或剪斷腋下血管或剪斷眼球采血。
    2.抗凝 采集血液zui關鍵的問題是抗凝,采用什么方法進行抗凝,則根據(jù)實驗的要求和條件而定。zui常用的方法如下:
    (1)肝素抗凝:采血時,使每ml血液含15U~20U肝素即可。計算采集的血液量,按1 000U/ml的量加入肝素,直接放入采血容器中,采血時,邊采血邊輕輕搖動,使抗凝劑和血液混勻。對于采少量的血液或小動物采血,可直接用注射器抽取一定量的肝素液,再采血直接抗凝。
    (2)EDTA抗凝:采血前,用滅菌生理鹽水將EDTA配制成4%溶液,然后按預采血液的量,以每ml血液加入1mg~2mg的EDTA的液體量于采血容器內(nèi)。采血,并不斷搖動采血容器,使之混勻。
    (3)玻璃珠法:預先將適量的玻璃珠(根據(jù)采血量多少而定)清洗后,裝入采血容器中,滅菌后備用。采血過程中,邊采邊搖采血瓶,以使小玻璃珠在血液中滾動,以機械地除去纖維蛋白,使血液不能凝固。本法雖較麻煩,但對淋巴細胞的活性影響zui小,且可減少血小板的混雜。
    (4)阿氏液采血:以阿氏液和采血量以1︰1比例采集血液,邊采邊輕輕搖動采血瓶,使之混勻。用阿氏液采血,除了抗凝外,多用于紅細胞的保存。一般在4℃條件下,阿氏液中保存的紅細胞2周其活性和特性不變。

    紅細胞的分離技術

    (一)材料與試劑

    1.肝素等抗凝劑
    2.3%明膠液 取明膠3g,溶于0.9%滅菌鹽水100ml中,114.3℃滅菌10min,冷卻后4℃冰箱保存。臨用時,37℃預熱10min。
    3.阿氏液

    (二)操作方法
    1.采血抗凝,即為紅細胞。由于紅細胞與白細胞的比例相差懸殊,一般白細胞混雜在其中,忽略不計。
    2.根據(jù)紅細胞的用途,可做進一步的處理。如計算紅細胞,可直接稀釋計數(shù)。如需做補體結合反應,或其它溶紅細胞反應,則需將紅細胞進行充分的清洗,以除去附著在紅細胞膜表面的血漿。一般用等滲的稀釋液連續(xù)清洗,2 000r/min離心10min,重復3~4次。
    3.如需儲藏備用,則以阿氏液做抗凝劑采血,混勻后置4℃冰箱保存,可保存2周,其活性尚可。

    淋巴細胞的分離技術

    (一)材料與試劑
    1.淋巴細胞分層液有兩種:
    (1)聚蔗糖—泛影葡胺液:聚蔗糖(polysucrose solution),商品名Ficoll,分子量400 000,多配制成40±1%(W/V)水溶液,也有干粉出售。應用時,用蒸餾水配制9%溶液。泛影葡胺溶液(Meglumini diatrizoici),商品名Vrografin,結構式為3,5—二乙酰氨基2,4,6三碘苯甲酸1—去氧—甲氨基山梨醇。含量為60%或75%,每安瓶為20ml裝,常用于人的臟器造影。應用時,取60%泛影葡胺原液20ml,加雙蒸餾水15.38ml,即為33.9%泛影葡胺。

    1.077±0.001聚蔗糖—泛影葡胺的配制:
    9%聚蔗糖液 24份
    33.9%泛影葡胺液 10份
    混合即可。必要時,可測比重。需要備用,可用G5漏斗過濾除菌或114.3℃高壓滅菌15min,4℃保存。一般可保存3個月。
    如要配制不同比例的分層液,可按下列公式計算:
    式中dm為分層液的比重,d1和d2分別為9%聚蔗糖和33.9%泛影葡胺的比重,V1和V2分別為它們的體積。如需配制1.077比重的聚蔗糖—泛影葡胺的分層液,則9%的聚蔗糖和33.9%的泛影葡胺的比例應為100︰46.3。
    (2)泛影葡胺—右旋糖酐(dextran)液
    34%泛影葡胺液 10份
    60%右旋糖酐液 12.5份
    混合,即為比重1.07~1.09的分層液。分裝于棕色瓶中,4℃冰箱保存?zhèn)溆谩?br />
    2. 3%的明膠液 稱取明膠3g,溶于0.9%的滅菌生理鹽水,終體積100ml,114.3℃高壓滅菌10min,冷卻后4℃冰箱保存,臨用時37℃預熱10min。

    3.Hank’s液。
    (二)操作方法
    1.取抗凝血,自然沉降,如是馬屬動物的血液,可直接直立試管架上,讓其自然沉降1h,取上層血漿。如是牛、羊血液,由于其血沉速度非常慢,可加等量3%明膠液,混勻后讓其自然沉降,1h后取上層血漿。
    2.2 000r/min離心10min,棄上清。
    3.沉淀用Hank’s液混懸后,再2 000r/min離心10min。
    4.重復步驟3一次,再用細胞營養(yǎng)液將白細胞制成懸液。此液含有整個白細胞群,包括粒細胞、淋巴細胞、單核細胞和部分紅細胞??晒┌准毎嫈?shù)用。
    5.取2ml細胞分層液于離心管內(nèi),同時用毛細吸管吸取約2ml的血漿(自然沉降1h的上層血漿)輕輕加入分層液上,直接加抗凝血也可。
    6.以水平轉子離心機2 000r/min離心20min。離心后,可見分成多層,zui下層是紅細胞,中間層是分層液,zui上層是血漿。在血漿層與分層液之間是一薄層較致密的白色層,即為單個核細胞層。
    7.用毛細吸管插入到單個核細胞層并吸取該層,放入另一試管中。
    8.以Hank’s液洗滌、離心,zui后配制成適當?shù)陌准毎麧舛?。必要時可計數(shù)。

    (三)注意事項
    1.血漿或血液加入分層液中時要小心,緩慢不要打亂液層、不要搖動。也可以將分層液加入到血漿的上層。
    2.保持淋巴細胞的活性是非常重要的,所以一般情況下,是現(xiàn)采血,馬上進行分離。
    3.經(jīng)過分層液分離的淋巴細胞層,實際上是單個核細胞層,包括單核細胞,不包括粒細胞。欲分離出純的淋巴細胞,則按下法除去單核細胞,或收獲單核細胞。

    T淋巴細胞的分離技術

    (一)原理
    混合單個核細胞懸液在通過尼龍毛柱時,B細胞、漿細胞、單核細胞和一些輔助細胞被選擇性粘附于尼龍毛上,而多數(shù)T細胞則通過尼龍毛柱,這是獲得富含T細胞群的有效方法。

    (二)材料及試劑
    1.尼龍毛(Femwall Laboratories,LP-1 Leukoqak leukocyte Filters)。
    2.燒杯、鋁箔、漏斗、一次性手套等。
    3.裝填尼龍毛柱,一次性注射器。
    4.取自然沉降的上層血漿,過聚蔗糖—泛影葡胺分層液后,獲取的血漿和分層液之間的單個核細胞層。

    (三)操作方法
    1.尼龍毛的清洗與干燥
    (1)戴上已經(jīng)洗去滑石粉的一次性手套,將尼龍毛(1包或2包,每包35g)放入燒杯中,加入蒸餾水或去離子水,用鋁箔蓋上燒杯并煮沸約10min。
    (2)冷卻至常溫,倒入漏斗內(nèi),使水滴干。
    (3)重復(1)、(2)步驟6次。
    (4)將尼龍毛攤在鋪有紗布的方盤內(nèi),37℃溫箱干燥2~3天后,貯藏在帶蓋的方盤內(nèi)。

    2.裝尼龍毛柱
    (1)取50ml玻璃注射器,拔去注射芯,在注射器頭上套一段帶夾子的膠管。
    (2)將尼龍毛梳理,并適當折疊,以適應注射器的直徑,填入注射器內(nèi),約20ml的體積。
    (3)將填好尼龍毛的注射器連同注射器芯一起包好,高壓滅菌。

    3.細胞分離
    (1)將注射器固定在支架上,倒入37℃的細胞培養(yǎng)液,關閉閥門一定時間,然后打開閥門,放掉細胞培養(yǎng)液,以清洗幾次尼龍毛,關上閥門。
    (2)將要分離的細胞液用預先加溫的培養(yǎng)液稀釋成適當?shù)臐舛龋s5.00×107個細胞/ml。
    (3)將細胞液倒入注射器內(nèi),使之沒過尼龍毛柱。蓋上注射器,37℃溫育45min
    至1h。
    (4)打開下口,緩慢放流(1滴/min),收集于離心管中。
    (5)離心,即獲所需的T淋巴細胞。
    (6)關閉注射器下口,于注射器內(nèi)加入0.85%冰冷生理鹽水,振蕩,并套上注射器芯,打開下口,使勁推出注射器內(nèi)液體,即獲得粘附于尼龍毛上的B淋巴細胞、漿細胞、巨噬細胞等。
    (四)注意事項
    1.此種分離法,T淋巴細胞也常有一部分被吸附,吸附的多少與尼龍毛的質量有關,與裝柱的松緊也有關系。
    2.此法的T淋巴細胞的回收率約20%~30%。
    3.用過的尼龍毛可回收,以鹽水洗滌,然后浸入0.1Mol/L的HCl中過夜,然后再同前法清洗。

    單核細胞分離技術

    (一)鐵粉吸附法
    1.材料及試劑
    (1)鐵粉或羰基鐵粉(Atomergic chemetals)99%的純度,顆粒小于60µm(Goodfellow Metals)。
    (2)強磁鐵(馬蹄形)。
    (3)一塊小棒狀磁鐵(約1cm長)。
    (4)毛細吸管等。
    2.操作方法
    (1)稱取一定量的鐵粉,一般為10g,用100ml生理鹽水洗滌4次,去除任何可溶性有毒物質。在倒去鹽水時,用強磁鐵吸住鐵粉。
    (2)用50ml生理鹽水混懸鐵粉。搖勻后,分裝于10個瓶中,包扎瓶口,121℃滅菌20min,拿出后立即輕輕搖勻,防止鐵粉結塊,儲藏備用。
    (3)臨用前,倒去瓶中的生理鹽水,加入適量的單個核細胞懸液(3ml~5ml,細胞總數(shù)為8×107個/瓶)。37℃溫育45min,中間不時晃動,使鐵粉懸浮起來。
    (4)加入一塊小磁鐵棒于瓶中,讓其吸住鐵粉以及附著在鐵粉上的細胞。
    (5)倒出懸液,此懸液主要是淋巴細胞,離心,收集。
    (6)在鐵粉瓶內(nèi)倒入一定量的Hank’s液,用力振搖后,以強磁鐵吸附,幾分鐘后,倒出液體。
    (7)2 000r/min離心液體,管底即為單核細胞。

    (二)玻璃板吸附法
    將分離的單個核細胞傾于無菌潔凈的玻璃平皿內(nèi),置37℃ 30 min~40min,用毛細吸管輕輕吸取懸液,即為淋巴細胞。用適量的Hank’s液沖洗平皿,收獲即為單核細胞懸液。
     

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